免疫細胞治療（如CAR-T細胞治療、T細胞免疫療法等）培養基的培養步驟是一個高度專業化的過程，要求細胞能夠在合適的環境中增殖、分化，并維持活性。培養過程中，細胞需得到足夠的營養、激活信號以及增殖因子支持，才能在臨床治療中發揮最大效力。以下是免疫細胞治療培養基的常見培養步驟：
1.準備培養基和試劑
選擇合適的基礎培養基：常用的基礎培養基包括RPMI-1640、IMDM、X-VIVO15等。這些培養基應根據具體的免疫細胞類型和治療需求選擇。
補充必要的生長因子和細胞因子：如IL-2（白細胞介素-2）、IL-7、IL-15等，這些因子是免疫細胞增殖和活化的關鍵。
添加血清或無血清培養基：一些免疫細胞治療可能采用無血清培養系統（如StemMACS™），以降低血清中的雜質或抑制免疫反應。
抗生素和其他試劑：視具體需要，可能添加青霉素、鏈霉素、L-谷氨酰胺等抗生素和氨基酸，以保持細胞健康。
2.分離免疫細胞
采集患者外周血（或健康供體）進行單核細胞分離。通常使用密度梯度離心法（如Ficoll-Paque）或自動化分選技術（如磁珠分選）分離外周血單核細胞（PBMCs）。
分選T細胞：可以采用流式細胞術、磁珠分選等方法進行特定的T細胞分選，如分選CD3+、CD4+或CD8+T細胞。
激活T細胞：使用抗CD3抗體和抗CD28抗體等，或者通過人工抗原呈遞細胞（APC）或樹突狀細胞（DC）來刺激T細胞。
3.細胞擴增與激活
細胞激活：通常通過細胞因子（如IL-2、IL-7、IL-15）及激活分子（如抗CD3/CD28抗體）的刺激來激活T細胞。此步驟通常需要培養幾天，以確保細胞的激活與增殖。
細胞增殖：在激活的過程中，細胞會在培養基中增殖，通常需要定期檢測細胞的增殖情況。
添加培養因子：根據具體的治療需求，可以添加特定的培養因子，幫助細胞增殖和分化。如在CAR-T細胞療法中，可能會用到如IL-2、IL-7、IL-15等因子來促進T細胞的增殖。
4.CAR-T細胞的轉導
基因轉導（如病毒載體）：對于CAR-T細胞療法，免疫細胞需通過病毒載體（如慢病毒、腺病毒）將抗原受體基因導入T細胞。轉導通常會在培養過程中進行。
轉導后檢測：轉導后的細胞需要檢測轉導效率（如通過流式細胞術檢測CAR表達）和細胞存活率。
5.細胞擴增階段
繼續培養和擴增：通過添加合適的培養因子和細胞因子，繼續在培養基中擴增免疫細胞。通常，這一過程持續10–14天，具體時間取決于細胞類型和治療目的。
調整培養條件：根據細胞增殖情況和活性，調整培養基中的成分，如改變IL-2濃度、培養溫度等。
6.細胞檢測與質量控制
細胞活性和增殖檢測：使用CCK-8、MTT等方法檢測細胞的增殖情況。可以通過流式細胞術監測T細胞活性標志物（如CD69、CD25等）的表達，確保細胞處于激活狀態。
CAR-T細胞表面標記檢測：采用流式細胞術、Westernblot等方法檢測CAR-T細胞表面抗原受體的表達。
細胞毒性檢測：通過流式細胞術或MTT法檢測免疫細胞對靶細胞的細胞毒性。
無菌檢測：確保培養基和細胞的無菌性，避免細菌、真菌污染。
7.細胞收獲與制備
細胞收獲：培養周期結束后，通過離心收獲培養皿中的細胞。
細胞清洗：去除殘余培養基和因子，使用PBS等緩沖液進行清洗。
細胞濃度調整：將細胞懸液調整到所需濃度，通常在臨床治療中使用的細胞濃度為1×10^6至1×10^8細胞/mL。
細胞活性檢測：使用臺盼藍、流式細胞術等方法檢測細胞的活性，確保細胞健康。
8.凍存或輸注
凍存：對于一些治療需要延遲使用的細胞，需采用合適的凍存液（如含DMSO的凍存液）凍存細胞，并儲存在-80°C或液氮中。
直接輸注：對于某些治療，可能需要將細胞直接輸注給患者。在此之前，需要確保細胞不受污染、活性保持以及質量符合標準。
9.最終產品的質量控制
在細胞治療產品準備好后，需要進行詳細的質量控制（QC）檢測，確保產品符合臨床標準。檢測內容可能包括：
細胞活力
轉導效率（如果是基因改造細胞）
細胞功能（如細胞毒性、細胞因子分泌等）
微生物污染檢測
免疫表型分析（如CAR表達、T細胞亞群分析）
總結
免疫細胞治療培養基的培養步驟涵蓋了從免疫細胞分離、激活、增殖，到基因轉導、細胞功能檢測、收獲和輸注的全過程。每個步驟都需要嚴格的質量控制，確保治療細胞具備高效的功能和安全性。不同類型的免疫細胞治療可能會有不同的培養策略和細胞因子配方，因此，在進行免疫細胞治療時，需要根據具體治療方案選擇適合的培養基和操作流程。
